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逆转录聚合酶链式反应

Materials Required

• 模板 RNA
• 引物
• 反转录酶
• dNTP
• 缓冲液
• PCR 仪
• 移液枪及吸头
• PCR板
• 离心管
• 0.2 mL PCR管
冰盒 (HY-E0001)

一、实验原理

反转录 (reverse transcription, RT-PCR):反转录技术,简单来说是以 RNA 为模板,合成 DNA 的过程。RT-PCR 是对分子生物学的中心法则的修正和补充[1]。反转录可以表述为:逆转录和反转录。(1) 反转录是在研究过程中,人为提取 RNA 并以之为模板,在体外合成 DNA。(2) 逆转录是 RNA 病毒的自主行为,以自身遗传物质为模板,在体内合成 DNA。

RT-PCR 具有简单性、特异性、敏感性,可用于检测细胞中基因的表达水平、表达差异;检测 RNA 病毒含量;克隆特定基因的 cDNA 序列。当前已发展实时逆转录聚合酶链式反应,在反转录 PCR 中加入荧光报告分子来监测 PCR 反应每个周期中扩增产物的产生。该方法无需通过凝胶电泳检测扩增产物,具有简单性、特异性、敏感性,以及高通量适配性[2]

反转录是以 RNA 为模板,合成 DNA 的过程。 RT-PCR 具有简单性、特异性、敏感性,可用于检测细胞中基因的表达水平、表达差异;检测 RNA 病毒含量;克隆特定基因的 cDNA 序列。

MCE 尚未独立证实这些方法的准确性。 它们仅供参考。

二、实验材料

实验要素:模板 RNA、引物、反转录酶以及其他 (dNTP 及缓冲液)。

实验过程:以 mRNA 为复制模板,经逆转录酶 (I) 的作用,合成与 mRNA 互补的 DNA 链 (即 cDNA)。合成 cDNA 第一条链后,mRNA 被降解,DNA 聚合酶 (II) 继续以 cDNA 第一条链为模板,合成 cDNA 第二条链,由此得到双链 cDNA 分子。


1. 模板 RNA

模板 RNA 的质量决定产物 cDNA 的浓度、纯度、完整度。为避免模板 RNA 的条件限制,应注意如下事项:

(1)获得高纯度、完整度总 RNA。减少盐离子、金属离子、乙醇、苯酚等无机杂质对反转录酶的效率的限制。避免断裂、不完整 RNA 模板影响 cDNA 长度与质量。注:MCE 提供离心柱型 RNA 提取试剂盒 (HY-K1082)。该试剂盒可对病毒 DNA/RNA 抽提,获得产物适用于 PCR、RT-PCR、qPCR、qRT-PCR 等。

(2)增加孵育处理。RNA 的二级结构会引起反转录酶提前终止反应,或从模板脱落。调节温度条件、孵育 RNA,可变性 RNA 二级结构、抑制二级结构形成。

(3)去除基因组 DNA (gDNA)。可加入 DNaseⅠ 预处理 RNA,去除 gDNA。并注意在反转录前灭活内切酶,保证产物 cDNA 的纯度。注:MCE 提供预混 DNA 消化酶的反转录试剂盒 (HY-K0511A)。试剂盒配有 gDNA digester,可消除基因组 DNA 污染,保证产物中 cDNA 的独一性。


2. 引物

反转录过程的引物类型分为三种[3]

(1)多聚胸腺嘧啶引物 (Oligo(dT)):可合成全长 cDNA。要求模板 RNA 具有高完整性,并含 Poly(A) 尾、二级结构简单。可应用于构建真核生物 cDNA 文库,克隆全长 cDNA。

(2)随机引物:PCR 产量高,适用范围广。适用原核生物 RNA,rRNA,tRNA,circRNA,microRNA,降解 RNA,以及高 GC 含量和复杂二级结构的 RNA。但特异性差,合成 DNA 片段短。可应用于 circRNA 的反转录,或与 Oligo (dT) 搭配使用。

(3)基因特异引物 (GSP):特异性强,仅扩增目的片段;要求退火温度较高。可应用于一步 RT-PCR 反应。


3. 反转录酶

反转录酶的发现补充了中心法则,摘得了 1975 年的诺贝尔生理学和医学奖。目前常用的反转录酶主要有两种:一种是来源于禽成髓细胞性白血病病毒 (Avianmyeloblastosisvirus, AMV) 的 AMV 反转录酶,另一种是来源于莫洛尼鼠白血病病毒 (Moloneymurineleukemiavirus, MoMLV) 的 MOMLV 反转录酶。

表 1:不同类型反转录酶的比较
类型 AMV MLV
最适温度 45-50 ℃ 37-42 ℃
RNase H 活性
产物合成长度 短(2-3 kb)
模板浓度要求
适用范围 不适用复杂/高 GC 的 RNA 适用复杂/高 GC 的 RNA

三、实验步骤

1. RT-PCR 通常具有一步法或两步法,详见表 2:

表 2:一步法和两步法 RT-PCR 的比较
两步法 一步法
特征 独立于 qPCR 反应,模板消耗量小 反转录与 qPCR 一步进行,操作简便
区别 可用于第一链 cDNA 合成的引物为:GSP 引物,Oligo (dT) 引物,随机引物 可用于第一链 cDNA 合成的引物为:GSP 引物
优点 引物和扩增酶的选择灵活;适用于单个样品中检测或克隆多个基因的 mRNA。 可预混扩增酶和逆转录酶,转管步骤少,污染可能性低;灵敏度高,适用于大量样品分析;适用于定量 PCR。
应用 适用于分析基因数目较多的情况;适用于调制 cDNA pool。 适用于基因数目较少,分析样品数目较多的情况;适用于表达水平较低的基因;适用于检测结果准确度要求高,或多基因表达水平差异小的情况。

2. 以 (HY-K0511A) 试剂盒为例,反应程序如表 3 所示。示例试剂盒配有 4× Super RT Mix,其含有 gDNA digester 抑制剂。

表 3-1:RT-PCR 反应体系配制示例 (HY-K0511A)
试剂 体系
1. gDNA 消化体系 (15 μL)
5× gDNA digester Mix 3 μL
Total RNA/mRNA 50 pg-5 μg RNA or 50 pg-500 ng mRNA
RNase-Free H2O To 15 μL
2. 孵育:上述体系使用移液枪轻轻吸打混匀,42℃ 反应 2 min。
3. 反转录反应体系 (20 μL)
反应“2”中反应液 15 μL
4× Super RT Mix 5 μL
表 3-2:RT-PCR 反应程序示例 (HY-K0511A)
程序 温度 时间
孵育 25℃ 5 min
反转录 55℃ 15 min
酶失活 85℃ 2 min

四、注意事项

1. 酶制剂要求

(1)gDNA digester Mix 或 Super RT Mix 等含酶预混液,均含有高浓度甘油。使用前应短暂离心收集到反应管底,并用移液枪轻轻吸打混匀后,准确吸取。

(2)所有反应体系应在冰上配制完成。


2. 实验条件

(1)建议使用 RNase-free 枪头和离心管,使用专用器具和无菌水,避免 RNase 污染;

(2)产物可立即用于 qPCR 反应,或在 -20℃ 保存,并在半年内使用;长期存放建议分装后在 -70℃ 保存。cDNA 应避免反复冻融。

五、相关实验

1. RNA 纯度和浓度的测定;

2. qRT-PCR 测定及分析。