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体细胞培养

Materials Required

• 培养箱 (按照细胞生长要求设置生长条件)
• 无菌操作室和无菌操作台
• 完全培养基 (基础培养基,血清,双抗等细胞所需营养)
• 不含钙、镁或酚红的平衡盐溶液
• 细胞解离试剂
• 细胞计数仪
• 光学显微镜
• 培养瓶,培养皿,无菌吸管等耗材

原理

细胞培养(cell culture)是指在体外模拟体内环境 (无菌、适宜温度、酸碱度和一定营养条件等),使之生存、生长、繁殖并维持主要结构和功能的一种方法,细胞培养也叫细胞克隆技术。细胞培养是细胞和分子生物学中使用的关键工具,可以对细胞的生理学和生物化学进行建模[1][2]

细胞培养增值过程分为四个阶段:停滞期,对数期,平台期,和死亡阶段。细胞在接种后进入新的生长环境后,需要一段时间适应环境,停滞期细胞生长缓慢,由于培养基内营养丰富,细胞生长过程中排出的有害物质少,细胞很快从延滞期进入对数期,细胞生长呈现指数增长,呈现出快速生长状态。经过一段时间的高速生长繁殖后,培养基内部营养物质消耗越来越大,有害物质逐渐积累,细胞数量已占据可用基质、没有扩增空间时,细胞增殖速度将大大降低甚至完全停止,则进入平台期,为了避免细胞进入死亡阶段,这时需要对细胞进行继续培养,以便细胞继续生长,并且刺激其进一步增殖。

停滞期:细胞从传代培养中恢复,附着在表面并开始扩散。

对数期:细胞呈指数增长,并以定义细胞系倍增时间的特征速率加倍。

平台期:培养物汇合,细胞生长减慢甚至停止。

死亡阶段:细胞开始死亡并从表面分离。

MCE 尚未独立证实这些方法的准确性。 它们仅供参考。

培养环境

不同的细胞有不同的培养要求,为了达到最佳的生长效果,需要在体外模拟体内环境,营造出细胞培养适宜的环境,可借助外在条件来满足。


• 合适的细胞培养基

培养基是培养环境中最重要的组成部分,因为它为细胞生长提供了必要的营养、生长因子和激素,并调节培养物的 pH 值和渗透压[4]

Table 1 培养基类型
培养基类型 例子
天然培养基 生物液体样本 血浆、血清、淋巴液、人胎盘脐带血清、羊水
组织提取物 肝,脾,肿瘤,白细胞和骨髓提取物,提取的牛胚胎和鸡胚
Clots 凝血剂或血浆凝块
人工培养基 平衡的盐溶液 PBS, DPBS, HBSS, EBSS
基础培养基 MEM, DMEM
复合培养基 RPMI-1640, IMDM

• 优质血清

血清是细胞培养过程中重要的营养物质,同时也对细胞起到一定的保护作用。血清来源于动物,且含有细胞培养中所需的各种营养 (血浆蛋白、多肽、脂肪、碳水化合物、生长因子、激素、无机物等)。血清能够调节细胞膜的通透性,提供促接触和生长因子使细胞贴壁免受机械损伤、对培养中的细胞起到某些保护作用。目前血清种类有很多种 (例如猪,兔,马,羊等),但胎牛血清 (FBS) 仍然是使用最广泛的血清,FBS可提供丰富的促进细胞体外发育和增殖的生长因子,是哺乳动物细胞培养最广泛使用的培养基补充物[5][6]


• 恒定的细胞生长温度

维持培养细胞旺盛生长,必须有恒定而适宜的温度。不同种类的细胞对培养温度要求也不同,细胞培养的最佳温度主要取决于分离来源的细胞宿主的体温[7]

Table 2 常见细胞培养温度[8][9][10][11][12]
细胞系 最适温度
人源细胞系 36-37.8℃
鼠源细胞系 36.8-39.5℃
兔源细胞系 34-37℃
斑马鱼细胞 27℃
禽源细胞系 39-41℃

• 合适的气体环境

细胞的体外培养需要理想的气体环境,氧气、二氧化碳是细胞生存的必要条件。氧气参与细胞的三羧酸循环,为细胞生存、代谢与合成提供能量;二氧化碳既是细胞的代谢产物,是细胞生长的必需成分,又与维持培养液的 pH 有关,4-10% 浓度的CO2 适用于大多数细胞培养实验。

细胞传代

大多数细胞大多数细胞为贴壁依赖性细胞,必须附着于固体或半固体基质上培养 (贴壁培养或单层培养),而另一些细胞则可在培养基中漂浮生长 (悬浮培养)。


• 贴壁细胞传代

1) 拿出一瓶或一皿长势良好的细胞 (细胞密度达到 70-90% 为最佳);

2) 使用无菌吸管把细胞上层培养基吸出;

3) 使用不含钙和镁的平衡盐溶液洗涤细胞,倾斜培养瓶或培养皿,缓慢将平衡盐溶液加进去,覆盖细胞即可,画十字交叉清洗,吸取废液,重复洗涤 2-3 次

4) 加细胞解离试剂,覆盖细胞 0.5 mL 即可,将培养瓶或培养皿放置在细胞培养箱中,实际孵育时间随所用细胞系而异,控制细胞解离试剂的时间很重要,时间过短细胞依旧是贴壁状态,处理时间过长会损坏细胞表面的蛋白;

5) 培养瓶放置显微镜下进行观察,发现胞质回缩,细胞间隙增大后,终止消化;

6) 轻轻倾斜倾斜培养瓶或培养皿,将吸出细胞解离试剂,再加培养液。如仅用胰蛋白酶可直接加少许含血清的培养液,终止消化;

7) 用无菌吸管吸取培养液,反复吹打瓶壁细胞,使细胞脱离瓶壁后形成细胞悬液,吹打时动作要轻柔不要用力过猛。

8) 将细胞悬液转移到 15 mL 离心管中,离心 800-1000 rpm,5 min;

9) 弃去上清,加新的完全培养液到离心管内,用吸管吹打形成细胞悬液;

10) 用细胞计数板进行计数,分别接种在新的培养瓶或培养皿内。


• 悬浮细胞传代

悬浮细胞传代过程比贴壁细胞简单易操作,悬浮细胞生长在培养基中,无需使用细胞解离试剂从容器表面解离下来,整个过程更快,对细胞的损伤更小。对于悬浮细胞,可以直接换液处理,也可以直接稀释培养瓶中的细胞并使其继续扩增。

1) 拿出一瓶或一皿长势良好的细胞,将细胞悬液转移到转移到 15 mL 离心管中,离心 800-1000 rpm,5 min;

2) 弃去上清,加新的完全培养液到离心管内,用吸管吹打形成细胞悬液;

3) 用细胞计数板进行计数,分别接种在新的培养瓶或培养皿内。

注意事项

1. 胰蛋白酶要预温,温度 37℃ 左右为宜。

2. 离心转速要合适,转速过低,不能有效分离细胞,离心速度过大,时间过长,会挤压细胞造成损伤甚至死亡。

3. 要定时观察细胞,发现污染,应及时处理。

参考文献: